Madame Loeva MORIN / Doctorant

Compétences

Communication orale et diffusion scientifique : - Présentation de posters lors de congrès : 21ème Édition des Journées de la Société Française de Myologie (2024, Clermont-Ferrand), 6ème Rencontre annuelle de la Société Française de Recherche sur les Cellules Souches (FSSCR) (2024, Paris), Symposium annuel de l'Institut Marseille Maladies Rares (MarMaRa) (2025, Marseille) et Colloque annuel des écoles doctorales ED658 et ED659 (2025, Marseille). - Communication vulgarisée auprès de non-spécialistes : présentation orale « Des dystrophies musculaires à la modélisation de la FSHD » pour l'association AMIS FSH (2024, Lyon-visio) et participation aux rencontres Médecins/Chercheurs stand FSHD lors des Journées des familles de l'AFM Téléthon (2025, Paris). Rédaction scientifique : - Utilisation d'outils bibliographiques (Formation Zotero). - Formation à la lecture critique et rapide de publications scientifiques (Boostez vos lectures en 5 jours). - Rédaction de résumés dans le cadre des séminaires, congrès et rapports de comité de suivi de thèse. Capacités d'analyse et esprit critique : - Formation à l'analyse de données (Analyse du Single-cell et Bulk RNA-seq, MOOC Gestion des données de la recherche). - Développement de l'esprit critique et d'une réflexion éthique autour de la recherche (MOOC Intégrité scientifique et Éthique de la recherche). Compétences en gestion de projet et organisation : - Participation à une formation dédiée à la gestion de projet (Initiation à la gestion de projet – Organisation d'un colloque). - Contribution active à des programmes de médiation scientifique (Chercheur.se en classe, Apprentis Chercheurs). Travail en équipe et collaboration interdisciplinaire : - Travail au sein d'équipes pluridisciplinaires par exemple pour l'analyse bio-informatique au sein de l'unité et avec l'Institut Pasteur à Paris et l'Université Catholique du Sacro Cuore à Rome en Italie dans le cadre de deux collaborations. - Echanges avec différents acteurs académiques, associatifs et cliniques dans le cadre de congrès et projets de recherche. Encadrement et transmission : - Supervision et formation de deux stagiaires en laboratoire (un étudiant en 2ème année de Master de Neurosciences (6 mois) et un étudiant en 1ère année de BTS Biotechnologie (8 semaines)). - Interventions pédagogiques auprès de publics scolaires avec la création d'une activité vulgarisée portant sur mon projet de recherche (Chercheur.se en classe) et participation à des activités de médiation (Apprentis Chercheurs, Fête de la science).

Techniques maîtrisées

Culture cellulaire (fibroblastes, myoblastes immortalisés, culture primaire issues de méningiome) et différenciation 2D/3D de cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSCs) en différents types cellulaires (fibres musculaires innervées par des motoneurones +/- adipocytes ou fibroblastes, motoneurones). Utilisation de la cytométrie en flux (classique et spectrale) et de la microscopie (flux calcique, confocale, light-sheet). Maîtrise de tests immunologiques (ELISA, Western blot). Réalisation de tests de régénération cellulaire (tests de migration de type scratch assay, induction de lésions par molécules) et enregistrements électrophysiologiques sur MEA. Expérience en analyses transcriptomiques (bulk RNA-seq), RT-qPCR, ChIP-PCR, ainsi qu'en histologie (coupes cryostat et microtome, colorations).