Soutenance de thèse de RAAD Elina


Titre de thèse

Nouvelles perspectives sur l'interaction d'enzymes fongiques agissant en tandem dans la dégradation de la lignine

Novel insights into the interplay of tandem-acting fungal enzymes in lignin degradation

Date

14 November 2025 à 14h00

Adresse

Polytech Marseille - Parc scientifique et technologique de Luminy 163 avenue de Luminy Case 925 13288 Marseille Cedex 09, Amphi A

Ecole doctorale

Sciences du Vivant

Specialité

SCIENCES DU VIVANT Biotechnologie

Etablissement

Aix-Marseille Université

Mots clés

Lacases,Déshydrogénases,Valorisation de la biomasse,

Keywords

Lacasses,Dehydrogenases,Biomass valorization,

Jury

Jury de thèse
Qualité Nom Etablissement
Directeur de recherche M. RECORD Eric Biodiversité et Biotechnologie Fongiques, INRAE - AIx-Marseille Université
Chargé de recherche M. SCIARA Giuliano Biodiversité et Biotechnologie fongiques, INRAE - Aix-Marseille Université
Directrice de recherche Mme GIUDICI-ORTICONI Marie-Thérèse Laboratoire de Bioénergétique et Ingénierie des Protéines, CNRS - Aix-Marseille Université
Professeur Mme MASTER Emma BioZone - Centre for Applied Bioscience and Bioengineering, University of Toronto
Associate Professor M. LUDWIG Roland Institute of Food Technology, BOKU University
Professeur M. MECHICHI Tahar National Engineering School of Sfax

Résumé de la thèse

Dans le contexte des bioraffineries de deuxième génération (2G), la dépolymérisation de la lignine représente un verrou majeur à lever pour la valorisation de la biomasse lignocellulosique. En effet, la lignine est à la fois très récalcitrante et c'est la fraction majeure de la paroi végétale qui est très peu valorisé. Un obstacle majeur réside dans la nature des enzymes oxydantes classiquement utilisée pour la dégradation de la lignine, telles que les laccases fongiques, mais qui pour l'instant ce sont révélées inefficaces in vitro. Bien que ces enzymes soient capables de générer des radicaux phénoxy reconnus comme impliqués dans le processus de la dégradation de la lignine, ces mêmes radicaux peuvent simultanément recombiner, favorisant des réactions de polymérisation. En effet, l'utilisation de laccases sur la lignine porte à des phénomènes indésirables d'un point de vue technologiques, tels que la repolymérisation et recondensation. Pour contourner ce phénomène, nous avons étudié la possibilité d'utiliser des flavoenzymes fongiques de la sous-famille AA3_2, en particulier l'oligosaccharide déshydrogénase (ODH), comme enzymes auxiliaires capable de moduler les réactions radicalaires générées par la laccase. Les analyses structurales de l'ODH ont révélé que cette enzyme possède une architecture du site actif polyvalente, permettant la reconnaissance de substrats à la fois saccharidiques et aromatiques. Une analyse en parallèle de l'aryl-alcohol déshydrogénase (AAD) a permis de démontrer que son site actif est spécialisé dans la reconnaissance de substrats alcooliques et aromatiques. Ces observations sont appuyées par des données biochimiques. Des essais cinétiques par spectroscopie UV-Vis ont montré qu'ODH peut réduire plusieurs radicaux phénoxy générés par des réactions laccases d'oxydation de composés modèles (acide sinapique et gaïacol). Lors de ces réactions, ODH est capable de ralentir, limiter et inhiber les réactions radicalaires, et également de les rediriger vers des produits à faible poids moléculaire insensibles à l'activité laccase, donc une voie pour la dépolymérisation (avec acide sinapique). Pour confirmer cette hypothèse, nous avons étudié l'effet de traitements de la laccase sur des lignines modèles solubles en milieux aqueux, comme les lignosulfonates. Ces réactions ont été effectuées en présence d'acide sinapique, et en présence ou absence de flavoenzyme. Une analyse par chromatographie d'exclusion stérique des lignosulfonates traités a confirmé qu'ODH peut inhiber des réactions de repolymérisation observées au contraire avec la laccase seule. De plus, avec ODH on remarque l'apparition de composés avec des masses moléculaires apparentes plus faibles, qui suggère une dépolymérisation partielle, non visible avec la laccase seule. L'ensemble de nos résultats montre que même si ODH réduisent les radicaux phénoxy, l'effet global n'est pas uniquement l'inhibition des réactions de la laccase, au contraire, elle semble jouer un rôle de maintien d'équilibre redox. Cet équilibre s'opèrerait en préservant une réserve de composés phénoliques réduits et de faible masse moléculaire, qui peuvent à leur tour servir à nouveau de médiateurs pour les activités laccase. Ces résultats pointent à un rôle inédit des flavoenzymes fongiques dans le contrôle de l'environnement radicalaire lors de la dégradation de la lignine, notamment pour : i) maintenir un réservoir de composés phénoliques réduits et de faible masse moléculaire pour les réactions laccase ; ii) rediriger les produits de réaction vers des espèces inertes de faible poids moléculaire ; iii) inhiber les réactions de « repolymérisation » des lignines modèles ; iv) favoriser les réactions de « dépolymérisation » de lignines modèles. Ils ouvrent ainsi la voie à de nouvelles stratégies enzymatiques pour déverrouiller le verrou que représente la lignine dans de nombreux procédés, tels que la bioraffinerie 2G.


Thesis resume

In the context of second-generation (2G) biorefineries, lignin depolymerization represents a major bottleneck to the valorization of lignocellulosic biomass. Indeed, lignin is both highly recalcitrant and the main fraction of the plant cell wall that remains largely unexploited. A key obstacle lies in the nature of oxidative enzymes traditionally used for lignin degradation, such as fungal laccases, which have so far proven ineffective in vitro. Although these enzymes can generate phenoxy radicals, known to be involved in the lignin degradation process, these same radicals can simultaneously recombine, favoring polymerization reactions. In fact, the use of laccases on lignin leads to undesirable technological phenomena such as repolymerization and recondensation. To overcome this limitation, we investigated the possibility of using fungal flavoenzymes from the AA3_2 subfamily, in particular oligosaccharide dehydrogenase (ODH) as auxiliary enzymes able to modulate radical reactions generated by laccase. Structural analyses of ODH revealed that this enzyme possesses a versatile active-site architecture, allowing recognition of both saccharide and aromatic substrates. In parallel, analysis of aryl-alcohol dehydrogenase (AAD) demonstrated that its active site is specialized for the recognition of alcohol and aromatic substrates. These observations are supported by biochemical data. Kinetic assays using UV-Vis spectroscopy showed that ODH can reduce several phenoxy radicals generated during laccase oxidation of model compounds (sinapic acid and guaiacol). During these reactions, ODH is able to slow down, limit, and inhibit radical chain reactions, as well as redirect them toward low-molecular-weight products that are insensitive to laccase activity, thereby enabling depolymerization (as observed with sinapic acid). To confirm this hypothesis, we studied the effect of laccase treatments on soluble model lignin compound in aqueous medium, such as lignosulfonates. These reactions were carried out in the presence of sinapic acid, with or without flavoenzymes. Size-exclusion chromatography analysis of treated lignosulfonates confirmed that ODH can inhibit the repolymerization reactions, in contrast to laccase alone. Moreover, with ODH, the appearance of compounds with lower apparent molecular masses was observed, suggesting partial depolymerization, which was not visible with laccase alone. Overall, our results show that although ODH reduces phenoxy radicals, the global effect is not merely the inhibition of laccase reactions; rather, it seems to play a role in maintain redox balance. This balance would operate by preserving a pool of reduced, low-molecular-weight phenolic compounds, which in turn can again serve as mediators for laccase activity. These findings highlight a novel role of fungal flavoenzymes in controlling the radical environment during lignin degradation, specifically by: (i) maintaining a reservoir of reduced, low-molecular-weight phenolics for laccase reactions; (ii) redirecting reaction products toward inert, low-molecular-weight species; (iii) inhibiting repolymerization of model lignins; and (iv) promoting depolymerization reactions of lignin models. This opens the way to new enzymatic strategies to overcome the lignin bottleneck in many process chains, including 2G biorefineries.