Soutenance de thèse de ZMERLI OMAR
Titre de thèse
La microscopie électronique à balayage, au tournant de la microbiologie clinique : nouveaux protocoles et modalités d'imagerie
Scanning Electron Microscopy at the Crossroads of Clinical Microbiology: Novel Imaging Protocols and Modalities
Résumé de la thèse
La microbiologie clinique constitue un pilier fondamentale de la médecine moderne, notamment face à l'émergence de pathogènes ayant un impact significatif sur la santé publique. Le besoin de méthodes rapides et simples pour la détection et l'évaluation de la susceptibilité aux antibiotiques des bactéries pathogènes reste d'actualité surtout avec l'émergence accrue de la résistance aux antibiotiques. Si les méthodes de culture restent la référence, leur lenteur et leur complexité compromettent la rapidité de la prise en charge thérapeutique. Les techniques moléculaires (PCR, NGS) ont amélioré les délais de détection, mais elles se limitent à l'analyse du matériel génétique, sans fournir d'informations sur la viabilité ou les profils de résistance phénotypique.
La microscopie reste un outil fondamental en microbiologie permettant l'observation directe des microbes. La microscopie électronique à balayage (MEB), grâce à sa haute résolution à l'échelle unicellulaire, a révolutionné l'étude morphologique bactérienne, mais son usage clinique reste limité par son coût, sa complexité technique et les besoins en expertise. L'émergence récente de MEB de table (MEBT) plus compacts, accessibles et faciles à utiliser, ouvre de nouvelles perspectives pour leur intégration dans les laboratoires de microbiologie clinique.
Ce travail a permis de mettre en place une stratégie pour étudier la faisabilité d'intégrer le MEBT en microbiologie clinique. L'objectif principal était de restaurer le concept fondamental de visualisation directe des bactéries, tout en dépassant les limites des méthodes diagnostiques conventionnelles.
Initialement, la MEBT a permis une visualisation rapide et quantitative de la viabilité bactérienne via une coloration simple, avec des résultats comparables à ceux des techniques de référence. L'étude s'est ensuite élargie à l'analyse morphologique des effets pharmacodynamiques d'antibiotiques, démontrant la capacité de la MEBT à discriminer les effets bactéricides (ex. Imipénème) et bactériostatiques (ex. Doxycycline) en moins de deux heures, contre 24h pour les tests classiques (MIC/MBC).
Cela a orienté les efforts vers le développement de tests rapides de sensibilité à la colistine, antibiotique de dernier recours dont les méthodes classiques sont lentes et complexes. La méthode SEM-AST a permis d'identifier la susceptibilité de bactéries Gram-négatives cliniquement pertinentes en seulement 30 minutes d'exposition, avec des résultats comparables à ceux obtenus par microdilution. Ces résultats soulignent le potentiel de la MEBT pour les tests rapides de sensibilité aux antibiotiques (RAST), ainsi que pour des applications diagnostiques en « point of care ».
Fort de ces résultats, le travail s'est élargi à des problématiques plus complexes, telles que la détection de bactéries à croissance lente, notamment C. burnetii, avec une réduction du délai de détection de trois semaines à trois jours. En parallèle, un protocole optimisé de préparation d'échantillons de selles a été développé pour permettre l'exploration du microbiote intestinal humain pour la première fois par MEBT, permettant une caractérisation morphologique directe des composants, en complément des approches métagénomiques et culturomics.
En conclusion, ce travail ouvre la voie à une nouvelle approche en microbiologie clinique, où l'imagerie directe offre des résultats rapides, visuels et exploitables. Les perspectives futures incluent l'élargissement des applications par l'intégration de l'automatisation pour des tests à haut débit, ainsi que l'utilisation de l'intelligence artificielle pour l'analyse automatisée des images. Cette thèse établit ainsi les bases pour la réintégration d'une technologie longtemps marginalisée dans la pratique clinique, en positionnant le MEBT comme un outil stratégique sur la paillasse du microbiologiste, capable d'accroître la rapidité, la précision et la profondeur des diagnostics dans la lutte contre les maladies infectieuses.
Thesis resume
Clinical microbiology (CM) is at the forefront of modern medicine, yet it faces persistent challenges that directly impact patient outcomes and public health. The urgent need for simple detection/tracking of pathogenic bacteria, and the need for rapid antimicrobial susceptibility testing (RAST) has intensified with the global rise of antimicrobial resistance (AMR). Culture-based methods remain a gold standard for bacterial detection and identification, but are slow, requiring days for results. Non-culture molecular techniques (PCR/NGS), revolutionized diagnostics by reducing detection times, but these methods primarily identify genetic material and cannot assess viability or phenotypic resistance, leaving critical gaps.
Microscopy is vital for microbiologists, offering the unique advantage of direct visualization. Scanning Electron Microscopy (SEM) revolutionized this with single-cell resolution to observe bacterial morphology and interactions. Yet high costs, expert requirements, and complex preparations limited its clinical use, confining SEM to specialized labs beyond frontline microbiologists' reach. However, SEM technology evolved, and a decade ago, compact tabletop SEMs (TSEM) emerged.
This thesis was built upon a strategy that explores the feasibility of integrating TSEM into the CM arsenal, restoring the basic microbiological concept of direct visualization to the forefront. This was achieved through rigorous works, each serving as a foundational brick, designed to precisely target major clinical bacteriology challenges and surpass routine methods' limitations.
The exploration begins with TSEM use for bacterial visualization and viability determination by simple staining, enabling rapid contrast-based differentiation of live and dead bacteria, with quantitative results matching gold-standard culture and fluorescent microscopy. The next challenge was to investigate morphological pharmacodynamics of antibiotics by developing a rapid evaluation of bacteriostatic (Doxycycline) and bactericidal (Imipenem) effects by analyzing bacterial growth, morphology, and viability within 60–120 minutes; compared to standard 24-hour MIC/MBC assays. This directed efforts toward rapid AST development, joining the global AMR race. The main target was rapid Colistin susceptibility testing, an emerging last-resort antibiotic with notoriously cumbersome and slow testing protocols. The SEM-AST assay rapidly revealed susceptibility in clinically relevant Gram-negative bacteria within 30 minutes of antibiotic exposure, matching broth microdilution results. This offers major potential for rapid point-of-care diagnostics and RAST applications.
These findings inspired the pursuit of complex microbiological frontiers. Slow-growing bacteria detection and growth monitoring remains a dilemma, especially for BSL-3 agents. We developed bacterial detection and growth monitoring for C. burnetii in axenic medium, reducing detection time from 3 weeks to 3 days. Probing deeper into complex bacterial communities, we crafted a sample preparation protocol for SEM human gut microbiota exploration, allowing identification and characterization of the components of this ecosystem. This adds crucial context to metagenomic and culturomics data, enabling researchers to correlate taxonomic information with morphological findings.
Conclusively, these findings pave the way for a new standard in microbial diagnostics where direct imaging provides rapid and actionable insights. The future vision is to expand these applications and integrating automation for high throughput testing and artificial intelligence with machine learning for automated image analysis.
In conclusion, this thesis effectively built the scaffold for reintegrating once-forgotten SEM technology into modern clinical microbiology, earning TSEM a spot on the microbiologist's bench to reform clinical microbiology's speed, depth, and precision in the ongoing battle against infectious diseases.