Soutenance de thèse de YAO Roseline


Titre de thèse

Le rôle des chitine oxydases dans le remodelage de la paroi cellulaire fongique : leçons tirées du modèle Ustilago maydis

On the role of chitin oxidases in fungal cell wall remodelling : lessons learnt from the model Ustilago maydis

Date

3 December 2025 à 14h00

Adresse

163 Avenue de Luminy, 13009 Marseille, Amphi A, Batiment Polytech de Luminy

Ecole doctorale

Sciences du Vivant

Specialité

SCIENCES DU VIVANT Microbiologie et interactions hôte-pathogènes

Etablissement

Aix-Marseille Université

Mots clés

Paroi cellulaire fongique,Chitine,Ustilago maydis,LPMO,Chito-oligosaccharide oxydase,

Keywords

Fungal cell wall,Chitin,Ustilago maydis,Lytic polysaccharide monooxygenase,Chito-oligosaccharide oxidase,

Jury

Jury de thèse
Qualité Nom Etablissement
Directeur de recherche M. BERRIN Jean-Guy BBF - Biodiversité et Biotechnologie Fongiques, INRAE / Aix-Marseille université
Directeur de recherche Mme VENEAULT-FOURREY Claire IAM - Interactions Arbres Microrganismes, INRAE / Université de Lorraine
Directeur de recherche M. FONTAINE Thierry Laboratoire Biologie et Pathogénicité Fongique, Institut Pasteur
Professeur des universités M. CLAESSEN Dennis The Claessen lab, Leiden University
Chargé de recherche M. BISSARO Bastien BBF - Biodiversité et Biotechnologie Fongiques, INRAE / Aix Marseille Université

Résumé de la thèse

La paroi cellulaire fongique est l'une des structures les plus essentielles et les mieux conservées dans tout le règne fongique. La paroi cellulaire fongique est une structure multicouche composée de polysaccharides et de glycoprotéines qui maintient la forme de la cellule et la protège contre les stress environnementaux. Sa composition et son organisation sont remodelées de manière dynamique grâce à l'action concertée de diverses enzymes actives sur les carbohydrates (CAZymes). Parmi les principaux polysaccharides structurels, la chitine joue un rôle central et peut être remodelée par les chitinases et les chitine désacétylases. En revanche, la contribution des oxydoréductases actives sur la chitine au remodelage de la paroi cellulaire reste peu étudiée. Ces travaux de thèse de doctorat ont porté sur l'étude de deux familles d'oxydoréductases actives sur la chitine et ses oligomères, en utilisant le champignon phytopathogène Ustilago maydis comme modèle. Ainsi, son unique ‘lytic polysaccharide monooxygenase' (LPMO) de la famille des AA10 (appelée UmAA10) et ses deux oligosaccharide oxydases de la famille AA7 (appelées UmAA7A et UmAA7B) ont été étudiées. La caractérisation biochimique de UmAA10 a montré une activité de type LPMO sur la chitine extraite à partir de la paroi cellulaire fongique. Le phénotypage in vivo a montré que UmAA10 fonctionne comme un facteur de virulence, contribuant probablement au remodelage de la paroi fongique pendant l'infection du maïs. Nos résultats indiquent que UmAA10 se lie à la paroi fongique via un nouveau type d'interactions sucre-protéine mis à jour entre les β-glucanes de la paroi et l'extrémité C-terminale désordonnée de sa séquence protéique. Par ailleurs, des analyses de transfert de gènes horizontaux (HGT) indiquent que UmAA10 a été acquise par HGT depuis des bactéries du sol, mettant en lumière son importance fonctionnelle, et que de tels événements de transfert de gènes se sont produits à plusieurs reprises dans le règne fongique. En ce qui concerne les UmAA7, des analyses phylogénétiques ont révélé que leurs séquences divergent considérablement des orthologues précédemment caractérisés, ce qui suggère une possible spécialisation fonctionnelle. Leur caractérisation biochimique et structurale a montré que les UmAA7 agissent comme des chitooligosaccharides (CHOS) oxydases/déshydrogénases. En effet, ces enzymes sont capables d'agir sur des CHOS désacétylés, entrant dans la composition du chitosane (une forme partiellement désacétylée de la chitine). Les comparaisons de structures, associées à des études de docking moléculaire, ont corroboré la caractérisation biochimique. À notre connaissance, il s'agit de la première mise en évidence d'une activité naturelle de type oxydase sur des CHOS désacétylés, révélant une nouvelle spécificité de substrat jusqu'alors inconnue au sein de la classe des carbohydrate oxydases. Les résultats de cette thèse soulignent le rôle potentiel des oxydoréductases dans les processus de remodelage de la paroi cellulaire fongique, ouvrant de nouvelles perspectives dans les divers domaines impliquant les champignons filamenteux et leurs parois, de la santé à l'agriculture en passant par les biotechnologies.


Thesis resume

The fungal cell wall (FCW) is one of the most essential and well-conserved structures throughout the fungal kingdom. The FCW is a multilayered structure composed of polysaccharides and glycoproteins that maintains cell shape and provides protection against environmental stresses. Its composition and organization are dynamically remodeled through the coordinated action of carbohydrate-active enzymes (CAZymes). Among the major structural polysaccharides, chitin plays a central role and can be remodeled by chitinases and chitin deacetylases. However, the contribution of chitin-active oxidoreductases to FCW remodeling remains understudied. This PhD thesis aimed to study two families of oxidoreductases active on chitin and oligomers thereof, using the phytopathogenic fungus Ustilago maydis as model system. We characterized its unique lytic polysaccharide monooxygenase (LPMO) from the AA10 family (so-called UmAA10) and its two oligosaccharide oxidases from the AA7 family (so-called UmAA7A and UmAA7B). We showed that UmAA10 is a chitin-active LPMO able to degrade FCW chitin. In vivo phenotyping indicated that UmAA10 functions as a virulence factor, likely contributing to FCW remodeling during maize infection. Our results indicate that UmAA10 is bound to the FCW through an hitherto never reported type of carbohydrate-protein interaction between FCW β-glucans and the C-terminal disordered extremity of the protein. Furthermore, horizontal gene transfer (HGT) analyses indicate that UmAA10 was acquired by HGT from soil bacteria, highlighting its functional importance, and that such gene transfer events have occurred multiple times across the fungal kingdom. Regarding UmAA7s, phylogenetic analyses revealed that their sequences diverge significantly from previously characterized orthologs, suggesting a possible functional specialization. Biochemical and structural characterization showed that UmAA7s act as chitooligosaccharide (CHOS) oxidases/dehydrogenases. Remarkably, these enzymes were found to act on deacetylated CHOS, which are building blocks of chitosan (a partially deacetylated form of chitin), with UmAA7B showing strong substrate preference for the latter. Comparative analyses of 3D-structures, together with molecular docking studies, supported the biochemical characterization. To our knowledge, this work provides the first evidence of natural carbohydrate oxidases acting on deacetylated CHOS, highlighting a previously unknown substrate specificity within this class of enzymes. The results of this PhD thesis highlight the potential role of oxidoreductases in FCW remodeling processes, opening new avenues in various fields involving filamentous fungi and their cell walls, from health to agriculture and biotechnology.