Ecole Doctorale

Sciences de la Vie et de la Santé

Spécialité

Biologie-Santé: Biochimie structurale

Etablissement

Aix-Marseille Université

Mots Clés

SsoPox,Lactonase,Ingénierie,Criblage,

Keywords

SsoPox,Lactonase,Engineering,Screening,

Titre de thèse

Amélioration et mise en oeuvre d'enzymes bloquant le quorum sensing bactérien pour des applications biotechnologiques
Improvement and implementation of quorum sensing blocking enzymes for biotechnological applications

Date

Jeudi 16 Juin 2022 à 14:00

Adresse

Faculté des Sciences Médicales et Paramédicales 27 Bd Jean Moulin 13385 Marseille Salle de thèse n°2

Jury

Directeur de these M. Eric CHABRIERE Aix-Marseille Université
Rapporteur M. Denis FAURE Université Paris Saclay
Rapporteur Mme Isabelle ANDRé Université de Toulouse
Examinateur M. Pedro MALDONADO COUTINHO Aix-Marseille Université
CoDirecteur de these M. David DAUDé Gene&GreenTK

Résumé de la thèse

Le Quorum Sensing (QS) est un système de communication utilisé par la plupart des bactéries pour adapter leur comportement en fonction de la densité de population et synchroniser différentes actions comme la virulence et la formation du biofilm. L’inhibition du QS, aussi appelée quorum quenching (QQ), est une stratégie prometteuse pour lutter contre les infections bactériennes chez l’Homme, l’animal ou les plantes. Parmi ces stratégies, l’utilisation d’enzymes capables d’interférer avec les signaux moléculaires des bactéries est particulièrement intéressante. L’enzyme thermostable SsoPox est capable de dégrader certaines molécules de communication des bactéries à Gram négatif : les acyl-homosérine lactones (AHL). Une stratégie d’ingénierie enzymatique a été menée afin d’augmenter l’efficacité de cette lactonase pour dégrader un certain type de lactones : les AHL à chaînes courtes, utilisées par un grand nombre de bactéries pathogènes. Neuf méthodes de criblages ont d’abord été optimisées pour permettre l’identification de variants à haut potentiel. Huit banques de mutagénèse ciblant des résidus de la boucle 8 de l’enzyme, connue pour moduler son activité lactonase, ont ensuite été criblées, permettant d’isoler des variants améliorés jusqu’à 297 fois sur les AHL ciblées par rapport à l’enzyme sauvage. La résolution de la structure tridimensionnelle des variants les plus performants a permis d’identifier les déterminants moléculaires responsables de cette amélioration d’activité. Le meilleur variant a ensuite été étudié in vitro afin d’évaluer sa capacité à bloquer le QS de Serratia sp. 39006, une bactérie modèle utilisant des AHL à chaines courtes. Une approche multiple combinant analyses phénotypiques, protéomiques et métabolomiques a permis de démontrer la capacité de l’enzyme à perturber de nombreux comportements de la souche comme sa capacité à former du biofilm, à produire des antibiotiques ou former les vésicules de gaz impliqués dans sa flottaison. Enfin, le spectre d’activité de SsoPox et de plusieurs variants a été étudié en profondeur et a permis d’identifier de nouveaux substrats de ces enzymes tels que des peptides ou des β-lactames. De fortes modulations des activités de promiscuité causées par les mutations de l’enzyme ont ensuite été mises en évidence, soulignant leur potentiel rôle dans l’acquisition de nouvelles fonctions enzymatiques.

Thesis resume

Quorum sensing (QS) is a communication system used by most bacteria to adapt their behavior according to population density and synchronize different actions such as virulence and biofilm formation. QS inhibition, also called quorum quenching (QQ), is a promising strategy to control bacterial infections in humans, animals or plants. Among these strategies, the use of enzymes able to interfere with the molecular signals of bacteria is particularly interesting. The thermostable enzyme SsoPox is able to degrade certain communication molecules of Gram-negative bacteria: acyl-homoserine lactones (AHL). An enzymatic engineering strategy was conducted to increase the efficiency of this lactonase to degrade a certain type of lactones: short-chain AHLs, used by a large number of pathogenic bacteria. Nine screening methods were first optimized to allow the identification of potentially highly active variants. Eight mutagenesis libraries targeting residues of loop 8, known to modulate the lactonase activity of the enzyme, were then screened leading to the isolation of variants improved up to 297-fold on the targeted AHLs compared to the wild type enzyme. Resolution of the three-dimensional structure of the best performing variants allowed the identification of the molecular determinants responsible for this improved activity. The best variant was then studied in vitro to assess its ability to block the QS of Serratia sp. 39006, a model bacterium using short-chain AHLs. A multiple approach combining phenotypic, proteomic and metabolomic analyses allowed to demonstrate the ability of the enzyme to disrupt many behaviors of the strain such as its ability to form biofilm, to produce antibiotics or to form the gas vesicles involved in its flotation. Finally, the activity spectrum of SsoPox and several variants was studied in depth and allowed the identification of new substrates such as peptides or β-lactams. Strong modulations of promiscuous activities caused by enzyme mutations were then revealed, highlighting their potential role in the acquisition of new enzymatic functions.